۱۳۸۹ آبان ۹, یکشنبه

گاسترولاسیون توتیای دریایی. دکتر محمودی






















An extracellular matrix molecule that is selectively expressed during development is important for gastrulation in the sea urchin embryo.
Berg LK, Chen SW, Wessel GM.
Department of Molecular and Cell Biology & Biochemistry, Brown University, Providence, RI 02912, USA.
The extracellular matrix is important in the regulation of many cellular events of early development including migration, shape change, proliferation and gene expression. In the sea urchin embryo, disruption of the extracellular matrix results in selective defects in each of these events during gastrulation. Here we describe a new molecule of the extracellular matrix in Lytechinus variegatus, referred to as ECM 18, that has several important features. First, antibody interference of ECM 18 results in a profound but reversible inhibition of primary mesenchyme cell organization and endoderm morphogenesis during gastrulation. Second, during gastrulation, ECM 18 mRNA accumulates to highest levels in the invaginating endoderm and the ECM 18 protein deposited in the basal lamina surrounding the archenteron as well as in other areas of the blastocoel wall. Immunolocalization by fluorescence and electron microscopy demonstrates the selective accumulation of ECM 18 in the extracellular matrix. Third, although the mRNA encoding ECM 18 is present throughout development, the protein accumulates only during gastrulation. ECM 18 protein is not detected in eggs or early embryos and analysis of polysome-associated mRNA suggests that at least part of the translational regulation of ECM 18 is at the level of ECM 18 mRNA-polysome formation. Finally, sequence analysis of ECM 18 shows that the protein contains a repeat sequence with a conserved cysteine motif, suggestive of involvement in protein-protein interactions. Thus, ECM 18 appears to be important in mediating select morphogenetic changes during gastrulation and the pattern of its expression in the embryo is unique among the extracellular matrix molecules known in this embryo.
PMID: 8625821 [PubMed - indexed for MEDLINE]

transcription Factor Activation in the Sea Urchin Embryo
It should be noted that the biochemical nature of the vegetalizing signal(s) has not yet been elucidated. Hörstadius interpreted these experiments in terms of gradients of animalizing and vegetalizing substances. More recently, Davidson (1989) sought to explain these phenomena in terms of transcriptional regulatory proteins (such as those that bind to promoters or enhancers) that are localized throughout the egg and that become activated by inductive interactions between adjacent cells. One of these factors, the one in the micromere precursors of the primary mesenchyme cells, is thought to become active autonomously, early in cleavage. This factor would cause the determination of the micromeres, alter their cell membranes so they could react with the cells above them, and initiate the cascade of determination. By the end of blastulation, there would be five territories that would constitute both the precursor cells for certain regions of the pluteus larva and the regions of specific gene activation. For example, the cytoskeletal actin gene, which is expressed only in the aboral ectoderm cells, cannot be activated anywhere else in the embryo. Similarly, if one injects the gene for the skeletal matrix protein anywhere else in the embryo except the region of skeletogenic mesenchyme, it will not be activated (Hough-Evans et al., 1987; Sucov et al., 1988). Therefore, each territory would constitute a region of differential gene expression that would be reflected in different parts of the organism being formed.
However, if the embryo is perturbed, the neighbors would differ. New fates would ensue as the new vegetal cells activated their skeletogenic mesenchyme determinants and started activation of their neighbors. To see if this was indeed the case, Ransick and Davidson (1993) transplanted micromeres into the animal cap of an 8-cell sea urchin embryo. These skeletogenic mesenchyme precursor cells induced the formation of the archenteron and the expression of the archenteron-specific genes. The fluorescently labeled micromeres did not contribute structurally to the secondary archenteron, but provided a short-range inductive signal that respecified the animal cap cells.
Literature Cited
Davidson, E. H. 1989. Lineage-specific gene expression and the regulative capacities of the sea urchin embryo: a proposed mechanism. Development 105: 421-446.
Hough-Evans, B. R., Franks, R. R., Cameron, R. A., Britten, R. J. and Davidson, E. H. 1987. Correct cell type-specific expression of a fusion gene injected into sea urchin eggs. Dev. Biol. 121: 576-579.
Ransick, A. and Davidson, E. H. 1993. A complete second gut induced by transplanted micromeres in the sea urchin embryo. Science 259: 1134-1138.
Sucov, H. M., Hough-Evans, B. R., Franks, R. R., Britten, R. J. and Davidson, E. H. 1988. A regulatory domain that directs lineage-specific expression of a skeletal matrix protein in the sea urchin embryo. Genes Dev. 2: 1238-1250.
© All the material on this website is protected by copyright. It may not be reproduced in any form without permission from the copyright holder.
HOME :: CHAPTER 8 :: SEA URCHIN CELL SPECIFICATION :: TRANSCRIPTION FACTOR ACTIVATION IN THE SEA URCHIN EMBRYO PREVIOUS :: NEXT

Home Link

گاسترو لاسون درتوتیای دریایی

توضیحات زیر مربوط به گاسترولاسیون در خارپوستان است .(جاندارانی با 3 لایه ی جنینی) هرچند توضیحات مربوط به تصویر گاسترلاسیون جانورانی است با دو لایه ی جنینی.





توتياي دریایی تسهیم کامل داردتسهیم اول ودوم هر دو نصف النهاری و عمود بر هم می باشد. تسهیم سوم مداری وعمود بردو صفحه ی تقسیم اول ودوم انجام شده قطب جانوری وگیاهی را از هم جدا می کند تسهیم چهارم کاملا متفاوت از سه تسهیم اول می باشد درتوتیای دریایی از کلیواژ ساده به طرف شکافتگی چهارم (پیشرفته تر ) هدایت شده ، چهار بلاستومر قطب نباتی به طور نامساوی تقسیم شده ، 4 میکرومر را در نزدیکی قطب نباتی و 4 ماکرومر را در بخش میانی ایجاد کرده سلول های قطب حیوانی نیز تقسیم نصف النهاری انجام داده و مزومرها را تولید می کند .
مرحله ی بلاستولای تکوین در توتیای در یایی از مرحله 128 سلولی شروع می شود.در این زمان سلول ها کرهی تو خالی را بوجود می آورند که حفره مرکزی بلاستوسل را در برمی گیرد.که حاوی مایع پروتیینی می باشد.بلاستومرها اطراف این حفره با اتصالاتی محکم صفحه اپی تلیالی پیوسته ای را ایجاد می کند.همچنین هر یک از سلولها (بلاستومرها)دربخشی از غشای سلولها که دور از حفره مرکزی بلاستوسل قرار دارد مژه دار می شود و بلاستولای مژه دار در پوشش لقاحی خود شروع به چرخیدن کرده ومتعاقب آن تمایز می یابند.
جنین در قطب نباتی شروع به پهن شدن کرده و به شکل پلاک نباتی در می آید ،برخی از سلول ها از قطب نباتی مهاجرت کرده وپس ازعبورتبدیل به سلولهای مزانشیمی اولیه می شوند ،سلول های مزانشیمی اولیه تقسیم شده و در امتداد ماتریکس خارج سلولی به طرف بخش های مختلف بلاستوسل می روند .
این مهاجرت بنابر اعتقادی بستگی دارد به پروتئوگلیکان سطح سلول ها و ملکول هایی بر روی غشای پایه که فیبرونکتین نامیده می شوند . حرکت سلول ها توسط فیلوپودیاها هدایت می شود به عبارتی این فیلوپودیاها محل سلول هدف را می شناسند.
ساختار (گودالی)به نام آرکنترون را ایجاد می کند که در دهانه ی آن بلاستوپور نامیده می شود .
توسعه آرکنترون توسط 3 مکانیسم ادامه می یابد:
1)درون خزیدگی اولیه ایجاد می شود . با انبساط پی در پی لایه ی درونی ساخته شده از فیبروپیلن و لایه ی خارجی ساخته شده از هیالین.
2)آرکنترون شکل می گیرد از توسعه ی همگرا (توسعه ای که به همه ی قسمت ها برسد ) . توسعه ی همگرا زمانی اتفاق می افتد که سلول ها در میان بافت باریکی جای گرفته و این ساختار به جلو حرکت می کند .
3)مزانشیم ثانویه کشیده می شود به نوک آرکنترون . مزانشیم ثانویه شکل می گیرد از سلول هایی که وارد می شوند و متصل به سقف آرکنترون باقی می مانند .

فیلوپودیا راهنمای هدایت است . که بعداً این ساختار در ناحیه دهان یافت می شود به محض رسیدن به هدف فیلوپودیا با اکتودرم تماس می یابد و سلول مزانشیم به قطب حیوانی می رسد و در نهایت یک حفره ی گوارشی ایجاد می شود که از همه ی راههای میان
جنین می گذرد .
4)لایه های 3 گانه ی جنینی شکل می گیرد . اندودرم به قطعه ی گوارشی ، اکتودرم شامل سلول های خارج گاسترولاست که در گاسترولاسیون نقش کمی ایفا میکند واین اکتودرم به پوست و سیستم عصبی مرکزی توسعه می یابد، مزودرم شامل سلول های مزانشیمی است که در بلاستوسل توسعه می یابد و تبدیل به اندام داخلی جنین می شود





مهاجرت انفرادی مزانشیم اولیه
عملکرد سلولهای مزانشیمی اولیه .مدت زمان کوتاهی پس از خروج بلاستومرها از پوشش لقاحی گروهی از سلولهای مشتق شده از میکرومرها نوعی تغیر شکل از حالت اپی تلیا ل به مزانشیمی پیدا می کنند.این سلولها اسکلت سلولی خود را تعغیر داده و بطری شکل می شوند همچنین اتصال خودرابا سلولهای جانبی از دست داده و با جدا شدن از لایه راسی وارد بلاستوسل می شوند.(شکل15-8ساعت 10-9)
این سلولهای مشتق شده از میکرومرها مزانشیم اولیه نامیده می شوند.از انجایی که این سلولها اسکلت لا روی راتشکیل میدهند و مزانشیم اسکلت زا نیز گفته می شود این سلولهای مزانشیمی قادرند زائدهایی بلند و نازک و منقبض شونده (به نام فیلو پودیا را به وجود اورند.

.در ابتدا به نظر می رسد که این سلولها به صورت تصادفی در امتداد سطح درونی بلا ستوسل حرکت می کنند.برای انجام حرکت زوائد فیلو پود یایی این سلو لها به طور متناوب اتصالاتی را با دیواره ی بلاستوسل برقرار کرده وسپس جدا می شوند نهایتا این سلولها در ناحیه شکمی – جانبی اینده ی بلاستوسل مستقر میگردند.در این مکان به طناب سین سیشیومی که در تشکیل محورکربنات کلسیمی اسپیکول های اسکلتی لارو نقش دارد ملحق می شوند (شکل d-e14-8)









شكل 8-15


اهمیت لایه ی ماده ی زمینه ای برون سلولی درون بلا ستوسل.
مهاجرت نسل میکرمری به درون بلا ستوسل در نتیجه ی از دست رفتن تمایل این سلولهای مزانشیمی اولیه برای اتصال به سلولهای مجاور و غشای هیالینی ودر عوض تمایل بالای انها برای اتصال یافتن به گروهی از پروتئینها که دربلاستوسل قرار گرفته اند رخ می دهد این نوع مدل مهاجرت مزانشیمی برای اولین بارتوسطgustafsonوwolpertدر 1967 ارائه شد ودر سال 1985زمانی که rachelfinkوdavidmcclay میزان قدرت اتصال بلا ستومرهای توتیایی دریایی به لایه ی هیا لینی غشای پایه ی بلاستوسل وسایر بلاستومرها رااندازه گیری کردند تایید گردید.

تمامی سلولهای بلاستولا در ابتدا از سطح بیرونی خود به لایه ی هیالینی و از سطح درونی خود به غشای پایه ی ترشح شده توسط خودشان متصل هستند .هر سلول از سطوح جانبی نیز به سلولهای همسایه اتصال دارد.finkوmcclayدریافتند که سلولهای اکتودرمی و اندودرمی اینده ی جنین (به ترتیب اعقاب مزومرها وماکرومرها)محکم به یکدیگر و به لایه ی هیالینی متصل می شوند اما اتصال این سلولها به غشای پایه سست است میکرومها نیز در ابتدا الگوی اتصالی مشابهی را دارند اما الگوی انها حین گاسترو لاسیون تغییر می کند در حالی که سلولهای دیگر اتصال محکم خود را با لایه ی هیالینی و سلولهای مجاور حفظ می کنند پیش سازهای مزانشیمی اولیه تمایل خود را نسبت به این ساختارها از دست می دهند (این تمایل به حدود 2درصد تمایل اولیه می رسد)اما تمایل انها نسبت به ترکیبات موجود درغشا ی پایه و ماده ی زمینه ای برون سلولی (نظیر فیبرونکتین)صد برابر بیشتر می شود




تمامی سلولهای بلاستولا در ابتدا از سطح بیرونی خود به لایه ی هیالینی و از سطح درونی خود به غشای پایه ی ترشح شده توسط خودشان متصل هستند .هر سلول از سطوح جانبی نیز به سلولهای همسایه اتصال دارد.finkوmcclayدریافتند که سلولهای اکتودرمی و اندودرمی اینده ی جنین (به ترتیب اعقاب مزومرها وماکرومرها)محکم به یکدیگر و به لایه ی هیالینی متصل می شوند اما اتصال این سلولها به غشای پایه سست است میکرومها نیز در ابتدا الگوی اتصالی مشابهی را دارند اما الگوی انها حین گاسترو لاسیون تغییر می کند در حالی که سلولهای دیگر اتصال محکم خود را با لایه ی هیالینی و سلولهای مجاور حفظ می کنند پیش سازهای مزانشیمی اولیه تمایل خود را نسبت به این ساختارها از دست می دهند (این تمایل به حدود 2درصد تمایل اولیه می رسد)اما تمایل انها نسبت به ترکیبات موجود درغشا ی پایه و ماده ی زمینه ای برون سلولی (نظیر فیبرونکتین)صد برابر بیشتر می شود

این تغییر در تمایلات سلولی موجب ازادسازی اتصالات سلولی میکرومرها از لایه ی هیالینی خارجی و سلولهای مجاور شده و باعث می شود که از طریق غشای پایه به داخل کشیده شده وبه درون بلاستوسل مهاجرت کنند (شکل a 16-8) این تغییر در تمایلات به دلیل تغییر در مولکولهای سطح سلولی است که در این زمان ایجاد می شودهمچنین پرو تئین هایی نظیر فیبرونکتین اینتگرین لامینین1وکادهرین ها نیز در این مهاجرت سلولی شرکت دارند .
همان گونه که درشکل cوb16-8نشان داده شده غلظت بالایی از مواد برون سلولی در اطراف سلولهای مزانشیمی اولیه ی در حال مهاجرت دیده می شود.در داخل بلاستوسل به نظر می رسید که سلولهای مزانشیمی اولیه در امتداد ماده زمینه ی برون سلولی دیواره بلاستوسل مهاجرت کرده و فیلوپودیای خود رابه سمت جلو گسترده می کنندچندین نوع پروتئین(نظیر فیبرونکتین و نوع خاصی گلیکوپروتئین سولفاته)
در شروع و حفظ این مهاجرت لازم و ضروری هستنداما این علایم جهت یابی کافی نیستند چرا که سلولهای در مهاجرت((میدانند))که چه موقع حرکت خود را متوقف کنند و اسپیکولها را نزدیک استوای بلاستوسل تشكيل دهند.
سلولهای مزانشیم اولیه به صورت یک حلقه در موقعیتی خاص و در امتداد محور جانوری-نباتی سازمان دهی میشوند-بسیاری از سلولهای مزانشیم اولیه در دو ناحیه نزدیک بخش شکمی اینده ی لارو تجمع
یافته با یکدیگر ترکیب شده و شروع به تشکیل اسپیکول می کنند(شکل17-8)


شكل 8-17

اگر میکرومر نشان دار شده ای از یک جنین به بلاستوسل جنین دیگری در مرحله ی گاسترولاسیون تزریق شود به محل صحیح مهاجرت کرده ودر تشکیل اسپیکول های جنینی شرکت می کندتصور می شود که اطلاعات مکانی مورد نیاز توسط سلولهای اکتودرمی اینده وغشا ی پایه ی انه فراهم می شود (شکلa18-8}
تنها سلولهای مزانشیمی اولیه (ونه انواع دیگر سلولها)قادرند به این علایم الگوبندی پاسخ دهند



شكل 8-18


.

millerوهمکارانش در 1995از وجود فیلوپودیا کاملا واضح (با قطر3/0ميكرو متر)در سلولهای مزانشیمی تشکیل دهنده ی اسکلت سلولی خبر دادند
به نظر می رسد که این فیلو پودیا در حرکت نقش فعالی نداشته بلکه به جستجوی دیواره ی بلاستوسل می پردازد وشاید در پاسخگویی به علایم الگو بندی پشتی – شکمی و جانوری نباتی صادر شده از اکتو درم نقش داشته باشد.

مرحله ی اول درون روی آرکنترون
هم زمان که سلول های مزانشیمی اولیه ی قطب نباتی جنین کروی را ترک می کنند ، تغییرات مهمی در سلول های باقی مانده ایجاد می شود.سلول های باقی مانده ضخیم و پهن شده و صفحه ی نباتی را تشکيل دهند.در نتیجه شکل جنین تغییر می کند شكل8 -51)ساعت 9سلول های صفحه ی نباتی به یکدیگر و به لایه ی هیالینی سلول تخم متصل باقی مانده و به گونه ایی حرکت میکنند تا فضاهای خالی به وجود آمده ی حاصل از مهاجرت مزانشیم اولیه را پر کنند. به علاوه صفحه نباتی به درون خم شده وپس از درون روی حدود 4/1الی 2/1به طور ناگهانی متوقف می شوند دهانه این ناحیه درون رفته (آرکنترون ) بلاستو پور نامیده میشود.
بررسیها نشان داده که لایه هیالینی موجوددر صفحه نباتی به دلیل تغییر در ترکیباتش به سمت درون خمیده میشود.لایه هیالینی درواقع از دو تیغه تشکیل شده است یک تیغه بیرونی متشکل از پروتیین هیالین و یک پروتیین درونی متشکل از پروتیین های فیبروپیلین .فیبروپیلین ها در گرانول های ترشحی تخمک ذخیره شده وپس از اگزوسیتوز گرانول های قشری ترشح می شوند و منجر به آزاد سازی پروتیین هیالین می گردند.درمرحله بلاستولا فیبروپلین ها شبکه ای تور ماننددر اطراف جنین ایجاد میکند .در حین درون روی سلول های صفحه نباتی شرو به ترشح گلیکو پروتیین کندرویتین سولفات به درون تیغه درونی لایه هیالینی میکند در نتیجهناحیه نباتی لایه هیالینی خمیده میشود اندکی بعد یک نیروی ثانویه که از حرکت سلولهای اپی تلیالی مجاور صفحه نباتی حاصل میشود با کشیدن لایه خمیده به درون موجب تسهیل در فرآیند درون روی می گردد.



سلول های مزانشیم ثانویه اولین گروه از سلول هایی هستند که درون روی نموده ، به درون بلاستوسل پیش روی می کنند و راس آرکنترون را تشکیل می دهند . آنها نهایتاً سلول های رنگدانه دار ، عضلات اطراف لوله ی گوارشی ، و کیسه های سلومی را تشکیل
می دهند سلول های اندودرمی مجاور مزانشیم مشتق شده از میکرومر ،لوله ی گوارشی قدامی را به وجود می آورند که فاصله ی بیشتری را در بلاستوسل مهاجرت می کند . لایه ی بعد سلول های اندودرمی لوله ی گوارشی میانی را به وجود می آورد . ردیف محیطی آخر نیز درون روی نموده ، لوله ی گوارش خلفی و مخرج را تشکیل می دهد



مراحل دوم و سوم درون روی آرکنترون

دنبال درون روی اول ، فاز دوم شکل گیری آرکنترون شروع می شود . طی این مرحله آرکنترون گسترده شده به گونه ایی که حتی ممکن است طول آن سه برابر شود . در طی این گسترده
شدن لوله ی گوارش کوتاه و عریض به لوله ای باریک و طویل تغییر شکل می دهد . برای این طریق مهاجرت بر روی یکدیگر و پهن شدن باز آرایی می شوند .
پدیده ایی که طی آن سلول ها در هم فرو می روند و موجب نازک شدن بافت شده و هم زمان یه سمت جلو حرکت می کنند بسط همگرا نامیده میشود .

در تمام گو نه های توتیای در یایی مرحله سوم طویل شدن آرکنترون نیز دیده می شود این مرحله انتهایی در اثر نیروی کششی که توسط سلولهای مزانشیم ثانویه ایجاد میشود آغاز میگردد .این سلولها راس آرکنترون را ساخته ودر همان جا مستقر میشوند سلولهای مذکوردر مایع بلاستوسل زواید فیلوپودیایی ایجاد می کنند که به طرف سطح درونی دیواره بلاستوسل کشیده میشود.فیلوپودیاهادرناحیه اتصالی بین بلاستومرهابه دیواره متصل شده سپس با کوتاه شدن خود آرکنترون را به بالا میکشند(شکل های 8-15و 8-21 ساعت 12و13)
. اگرتعدادی از سلول های مزانشیم ثانویه حذف شوند طویل شدن ادمه می یابد، اگرچه سرعت آن کند می شود . در این گونه سلول های مزانشیم ثانویه نقشی اساسی در کشیده شدن آرکنترون به سمت دیوار بلاستوسل حین مرحله ی انتهایی درون روی بازی می کنند. اما آیا فیلوپودیای مزانشیم ثانویه می تواند به هر بخشی از دیواره ی بلاستوسل متصل شود، یا این که هدف خاصی در نیم کره جانوری باید وجود داشته باشد تا اتصال صورت گیرد؟ آیا بخشی از دیواره ی بلاستوسل وجود دارد که متعهد شده تا بخش شکمی لارورابه وجود آورد؟ مطالعات صورت گرفته توسط Hardin وMcCIay در1990 نشان می دهد که ناحیه ی هدف ویژه ای برای فیلوپود یا وجود دارد که از سایر نواحی قطب جانوری متفاوت است فیلوپود یاگسترش می یابد و به صورت تصادفی به دیواره ی بلاستوسل متصل شده وسپس آزاد می گردد. با این وجودزمانی که فیلوپود یا با ناحیه ی خاصی از دیواره برخورد می کند اتصال خود را حفظ کرده ، منقبض شده وآرکنترون را به سمت خود می کشد. زمانی که Hardin وMcCIay سمت دیگر دیواره ی بلاستوسل رادرمعرض فیلوپود یاها قراردادند، فیلوپود یا به گسترش خود ادامه داده وبعد از برخورد با این دیواره ی دست کاری شده آن را رها نمودند. تنها زمانی که فیلوپود یا بافت هدف مورد نظر را پیدا کرد، حرکات خود را متوقف نمود

. اگرگاسترولا به اندازه ای طویل می شد که فیلوپود یا هرگزنمی توانست به ناحیه ی هدف برسد، سلول های مزانشیم ثانویه به جستجوی خود ادمه می دادند وسرانجام آرکنترون را رها کرده وبه صورت آزاد، هدف خود را جستجو می کردند. بنابراین،آنچه واضح است این است که در ناحیه ای که قرار است بخش شکمی لارورا به وجود آورد وهمچنین ناحیه ای از آکنترون که دهان آینده ی جنین را به وجودخواهد آورد،
بخش هدفی وجود دارد که توسط سلول های مزانشیم ثانویه شناسایی می شود . هم زمان با برخورد راُس آرکنترون با ناحیه ی هدف دیواره ی بلا ستوسل سلول های مزانشیم ثانویه روی بلاستوسل پخش می شوند، سپس تکثیر شده واندام های مزودرمی را به وجود می آورند (شکل 15-8 ساعت 5/13). جایی که آرکنترون با دیواربرخورد می کند، نهایتاً به دهان موجود تبدیل خواهد شد
سلول ها مزانشیمی اسکلت زاوارد rudiment شده تا صفحات اسکلتی اولیه سند شوند سمت چپ پلوتئوس سطح دهانی آینده ی جنین توتیای دریایی بالا را به وجود می آورد، حین دگردیسی، imaginal rudime لاروجدا شده سپس لاروتخریب می شود،درحالی که naginal rudiment ( که حالا جوانه نامیده می شود) مجد داً لوله ی گوارش خود ایجاد کرده ودر کف اقیانوس قرار می گیرد. همچنان به مواد غذایی که لاروها شده دریافت کرده وابسته است. الگوی گاسترولاسیون خاربوستان نمونه ی تکاملی تکوین پس دهانیازبه
حساب می آید.درپس دهانیان (خارپوستان ، تونیکات ها سفالوکوردات ها و مهره داران) منفذ اولیه تبدیل به مخرج می شود، درحالیکه منفذ دوم دهان را تشکیل می دهد (دوتروستوم به معنی دهان ثانویه). به علاوه درتوتیای
دریایی پدپده ی گسترش همگرا واستفاده ازبیان ژن Nodal درتثبیت محورها دیده می شود

بلوغ اووسیت و رشد جنین مرغ .استاد : سرکار خانم دکترمحمودی .تحقیق توسط : نرگس آرین جاه







آنچه هستی ، هدیه خداوند است به تو
و
آنچه میشوی ،هدیه توست به خداوند
پس
بی نظیر باش ، زیرا بی نظیر آفریده شده ای
دانشگاه آزاد اسلامی
گروه زیست شناسی
استاد : سرکار خانم دکترمحمودی
تحقیق توسط : نرگس آرین جاه
زیست تکوینی جانوری

The initial stages of development depend on m-rna and proteins accumulated in the oocyte , and during these stages , certain genes are essential for fertilization , first cleavage and embryonic genome activation .
The aim of this study was first to search for avian oocyt – specific genes
The activation of molecular pathways underlying oocyte to embryo transition (oet) depends exclusively on maternal Rnas and proteins accumulated during growth of the oocyte .
Indeed,by the two cell stage , the major pathways regulated by maternal mrna are targeted protein degradation, translational control and chromatin remodelling .
The recruitment of maternal mrna for translation has long been recognized as a widespread mechanism to generate newly synthesized proteins in maturing oocytes and fertilized eggs .
Conversely,rna that is not larger needed in the early embryo.
moreover, careful regulation of proteolysis during the same period is likely to be important in oocytes, which are prodominantly transcriptionally inactive and must often wait for long periods before fertilization in different species.
Maternal transcripts that are present in the early pre-implantation embryo can be subdivided into two classes according to whether they are synthesized soon after embryonic genome activation or not.
The firstis common to the oocyte and early embryo and is replenished after activation of the zygotic genome. The second consists of oocyte-specific mrna that is not subeqently transcribed from zygotic genes in the embryo this class of mrna may be detrimental to early post-fertilization development.
Birds represent a good model to observe progressive accumulation of mrna in the oocyte befor ovulation. The embryonic genome of a model bird(the chicken), is activated when the embryo contains 30000-50000 cells 24h after fertilization.
Protein and mrna, accumulated as the chicken oocyte matures,are essential not only for fertilization and first cleavage but also for supporting a high number of emberyonic cell divisions before genome activation.
The avian oocyte consists of a large amount af yolk and a structure called the germinal disc(gd). The gd is a white plaque of about 3-4mm diameter an the top of the oocyte. It contaions the nucleus and 99% of oocyte organelles althoughit occupies less than 1% of the cell volume.

تعيين جنسيت در پرندگان.ارائه:شهین شبرندی . استاد:دکتر محمودی



تعيين جنسيت در پرندگان
جنس تمام پرندگان از جمله شتر مرغ( ازگونه سينه پهن) به وسيله کرمزومهاي جنسي معين مي گردد . پرندگان نر داراي دو کرمزوم جنسي خاص خود هستند که Z ناميده مي شود . ( ZZ ) ماده ها داراي يک کرمزوم Z و يک کرمزوم W مي باشند . (ZW ) هنگامي که پرنده نر اسپرم توليد مي کند يک کرمزوم Z در اسپرم قرار مي گيرد . اما نقش ماده در هنگام توليد تخم متفاوت است . اگر کرومزوم W در تخم قرار گيرد جنيني که به وجود مي آيد ( ZW ) ماده خواهد بود . در صورتي که تخم داراي کرمزوم Z باشد ، جنين ( ZZ) نر خواهد بود . در مورد شتر مرغها و تقريباً همه پرندگان بر عکس انسان ، کرمزومهاي ماده تعين کننده جنس فرزندان مي باشد .
ژن (DMRT1 ) در پرنده ی سینه پهن ، نقش آن در تعیین جنسیت در پرندگان
خلاصه : بر خلاف پستانداران، پرندگان نر دارای کروموزوم zz و جنس مادهZW می باشند در بیشتر پرندگان کروموزوم z بزرگ و غنی است در حالیکه کروموزوم w کوچک و هتروکروماتینی است . هر ژن متمایز در سینه پهن zو w هستند بنابراین داوطلب قوی برای تعیین جنسیت هستند ، بخش داوطلب تعیین جنسیت در پرندگان ژن1 DMRTدر شتر مرغ استرالیایی (یکی از گونه های پرنده ی سینه پهن) می باشدکه درطول مراحل تمایز غده جنسی در جوجه بیان شده ، برطبق نقشه های ژني این ژن 1DMRT در ناحیه ديستال بازوی کوتاه Z وجود دارد و درروی کروموزوم W دیده نمی شود0 بطور غیره منتظره ،ترادف و توالی ژن DMRT1 شترمرغ استرالیایی 88 درصد همسانی دارد با توا لی DMRT1 موجود در جوجه و 65/0 هم همسانی با توالی ژن 1 DMRT موجود درانسان دارد ، یک ناحیهbp 270 جفت باز بیان نشده در اینترون3 ژن DMRT1شترمرغ استرالیایی که 90/ 0که همسان باتوالی وترتیب در اینترون مربوط به ژن DMRT1در انسان ،این حفاظت فوق العاده بالادرحدود300 میلیون سال از تکامل ، حاکی از یک تابع مهم است در کنترل بیان ژن DMRT1 و تعیین جنسیت درمهره داران 0
ژن DMRTبرای اولین بار در تعیین جنسیت مهره داران دخیل بود که این ژن توسط شناسایی در کروموزوم شماره9 انسان ، این ژن کد می کند پیام را که حاوی پروتئین می باشد که درتعیین جنسیت دخیل می باشد0
درموش خانگی ژن DMRT1 بطور وسیع درستیغ تناسلی هردوجنسxxوxy بیان می شود که درجنس نر درطی
گونادوژنردرلوله های منی ساز بیضه و سلولهای سرتولي دیده شده است وهمچنین درسلولهای بنیادین این ژن وجود دارد 0
پرندگان سیستم تعیین کننده ی کروموزوم جنسی دارند که درپرندگان نر zz ودرپرندگان ماده zw است کروموزوم شماره 9انسان باکروموزوم z درجوجه همسان است ،که ژن DMRT درانسان برروی كروموزوم شماره 9انسان می باشد ودرپرندگان برروی كروموزمZ می باشد ودركروموزم w درپرندگان وجودندارد0
واکنش RT-PCR که شامل CDNAوپرایمرهای DMEX3F1، DMTNE1، DMTNF2،DMTNR1، DMEX4R1 و همچنین dctp،dATP،dTTP و DNAپلیمراز دراین آزمایش (RT-PCR)PCRژن DMRT1 بیان شده در مرزتناسلی متمایز غده جنسی رانشان داده است0 تفاوت در بیان ژن DMRT1 باعث بوجود آمدن دوجنس نر و ماده می شود شکل(3) موقعیت پرایمرهای RT- PCR دراگزون DMRT1 و قطعه اینترون حفاظت شده،اگزون 4 رانشان می دهد.اینترون 3 حفظ شده ناحیه اي مسئول برای تنظیم فعالیت ژن DMRT1 می باشد و یک نقش مهم آن درتنظیم دوزژن تولیدی درپرندگان و بنابراین درتنظیم معیین جنسیت می باشد سینه پهن بزرگ وپرنده ای بدون پرواز است که در میان گونه های آن می توان شترمرغ آفریقایی و شترمرغ استرالیایی رانام برد آنها دارای کرو موزوم z که ازاندازه یکسان با کروموزوم موجه است وکارپوتیپ كروموزوم نشان می دهد که دو کروموزوم جنسی ازنظرتمام طول مشابه اند،برخلاف بخش هتروکروماتیني کروموزوم کوچکw درجوجه ،کروموزوم w شترمرغ استرالیایی بزرگ و جفت با z در بالاترین طول،کارپوتیپ کروموزومی z- DNA جوجه موید آن است کهZ شتر مرغ استرالیایی وWهمسان هستند اما ناحیه ای ویژه ی کوچک درWنزدیک سانترومراست که ماپیش بینی کردیم که این ناحیه ویژه درماده نشان دهنده ی تمایز ابتدايي zw رادرپرندگان مي باشد
بحث:
ما نتیجه می گیریم که ژن DMRT1 روی کروموزوم Z شترمرغ استرالیایی وجود دارد وکپی درکروموزوم W وجود ندارد و همچنین کشف کردیم توالی و ترادف حفاظت شده دردرون اینترون 3 ژن DMRT1 که این توالی اینترون 3 مسئول تنظیم بیان ژن DMRT1 می باشد 0
همسانی کروموزوم 9 انسان باکروموزوم Z جوجه موید این نکته است که ژن DMRT1 یک ژن حیاتی برای تعیین جنسیت درپرندگان می باشد و بیان DMRT1 درطي گنادوژنزدرجنین جوجه با این فرضیه مطاقبت دارد برطبق مشاهده ی نقشه های ژن DMRT1 درکروموزوم Z وعدم وجودآن برروی کروموزوم w درانسان دو نسخه ژن DMRT وجود دارد که برای تعیین بیضه ها لازم می باشند درکروموزوم ZZ پرنده نرژن DMRT1 فقط ازجمله هزاران ژن هایی است که روی کروموزوم Z وجود دارد که نظیر و همانند آن روی کروموزوم هتروکروماتینی کوچک w وجودندارد ودرصورت نبودن جهش وانتقال ژني ، ژن DMRT1درتعیین جنسیت پرندگان نقش دارد .
تعيين جنسيت ژنتيكي در شترمرغ
تعين جنسيت از طريق دي ان آ در شتر مرغها فقط نيازمند يک قطره خون است که از آن يک نمونه DNA استخراج مي شود . پس از طي چندين فرآيند شيميايي ، يک بر چسب راديو اکتيو ( به نام پروب 10 ) به زنجيره DNA چسبانده مي شود . که به دنبال بندهاي DNA در کرمزومهاي جنسي گشته و به آن مي چسبد . پروب نوع کرومزوم هاي جنسي ZZ يا ZW ( يعني نر يا ماده بودن پرنده را تعيين مي کند.يکي از بهترين جنبه هاي تعيين جنسيت از طريق DNA دقت بالاي آن است ( 99 درصد .)
تعيين جنسيت قناري با استفاده از روش PCR
چکيده: تعيين جنسيت اغلب پرندگان تا زمان بلوغ و حتي گاهي بعد از بلوغ امري نسبتا مشکل است. اما جنسيت پرندگان و ساير جانوران از بدو تشکيل نطفه، به لحاظ ژنتيکي معين است. امروزه با پيشرفت روش هاي مولکولي، تعيين جنسيت جانداران در هر مرحله از زندگي ميسر مي باشد. در تحقيق حاظر تعيين جنسيت در قناري با استفاده از واکنش PCR و براساس دو ژن CHD-W و CHD-Z شرح داده شده است. در اين تحقيق جمعا از 29 قطعه قناري استفاده شد. استخراج DNA از انتهاي کالاموس پر قناري هاي زنده صورت پذيرفت و با استفاده از پرايمرهاي اختصاصي طراحي شده در اين طرح، واکنش PCR تنظيم گرديد. نتايج نشان دهنده تکثير دو قطعه DNA به طول هاي 345 و 306 جفت باز براي جنس ماده و فقط يک باند 306 جفت باز براي جنس نر بود. اين نتايج براي كليه نمونه هاي پر مشاهده شد. از آنجا که طراحي اين سيستم تعيين جنسيت براي اولين بار در قناري مورد استفاده قرار مي گيرد و نتايج مولکولي با ويژگي هاي مورفولوژيک دو جنس نر و ماده کاملا مطابقت دارد، لذا تعيين جنسيت جوجه هاي قناري با انجام واكنش PCR روي نمونه هاي پر، آسان، سريع، بي خطر و ارزان مي باشد.




DMRT1 in a ratite bird: evidence for a role in sex determination and discovery of a putative regulatory element



Abstract.
Unlike mammals, birds have a ZZ male/ZW female sex-determining system. In most birds, the Z is large and gene rich, whereas the W is small and heterochromatic, but the ancient group of ratite birds are characterized by sex chromo­somes that are virtually homomorphic. Any gene differentially present on the ratite Z and W is therefore a strong candidate for a sex-determining role.
on the emu W chromosome are shared with the Z, the Z­specific location constitutes strong evidence that differential dosage of DMRT1 is involved in sex determination in all birds. The sequence of emuDMRT1 has 88 % homology with chicken DMRTl and 65% with human DMRTl.
Unexpectedly, an unexpressed 270-bp region in intron 3 of emu DMRT1 showed 90% homology with a sequence in the corresponding intron of human DMRTl. This extraordinarily high conservation across 300 million years of evolution suggests an important function, perhaps involved in control of DMRT1 expression and verte­brate sex determination.

In mouse, Dmrtl is expressed exclusively in the genital ridge of both XX and XY embryos, but as gonadogenesis proceeds, it becomes sex-spe­cific and restricted to the seminiferous tubules of the testis, present in both Sertoli and germ cells (Raymond et ai., 1999b, Smith et ai., 1999, De Grandi et ai., 2000). A role in mammali­an sex differentiation is confirmed by the observation that knocking out the proximal promotor and first exon (containing the DM domain) of the mouse Dmrtl gene produced XY mice with defective testis development.
Birds have a chromosomal sex-determining system in which ZZ birds are male and ZW birds are female. It has not been clear whether the W contains a female-determining gene or the Z contains a gene that operates via differential dosage, or both. Because human chromosome 9 is syntenic with the chicken Z chromosome,


lnation. Consistent with this hypothesis, a DMRTl homologue lies on the Z chromosome and is absent from the W in chickens (Nanda et ai., 1999). Experiments using reverse transcriptase PCR (RT-PCR) show that DMRTl is expressed in the genital ridge prior to gonadal differentiation and that male embryos express higher levels of DMRTl than female embryos (Ray­mond et ai., 1999b, Smith et al., 1999).
Although the location ofDMRTl on the Z chromosome and its absence from the small heterochromatic W in chickens is consistent with a role in sex determination, it is only one of thousands of genes specific to the Z chromosome. A better test of sex-determining potential of DMRT1would therefore be to clone and map the homologue of this gene to the nearly homo­morphic sex chromosomes of ratite birds.

linked in birds and, therefore, a candidate for bird sex determination
We therefore cloned and characterised DMRT1 from the emu (Dromaius novaehollandeae). This gene mapped to the Z chromosome but not to the W. This supports the hypothesis that DMRTl is the sex-determining gene in birds. Unexpected­ly, a non-expressed sequence was discovered in an intron that was highly conserved between the emu and human genomes, suggesting an important regulatory role.

RT-PCR reactions consisted of 0.2-ul volumes of template single­stranded cDNA; 100 ng of each primer; 0.2 mM each of dATP, dCTP, dGTP, and dTTP; 2.5 U Taql DNA polymerase (Boehringer Mannheim); and 1110 volume of Taq polymerase buffer (Boehringer Mannheim). PCR reactions were carried out in a Perkin-Elmer 9600 thermocycler under condi­tions chosen according to the annealing temperature of the primers used and the expected size of the product. Control PCRs were performed with water in place of template, as well as using the original sample as template, to test for contaminating DNA.
Primers
Primers used in the RT-PCR experiments involving DMRTl were
designed using the program OLIGO. The sequence of each primer was as follows: DMEX3FI: GAC TCC ACC TAC TAC AGC AG; DMINFI: TIT CCG ATA CTG CTG ATA GG; DMINF2: TTC CGA TAC TGC TGA TAG GG; DMINF3: ACA TAC CCT TCA CAC TAC AG; DMINRI: CTA TCA GCA GTA TCG GAA AA; and DMEX4RI: AAG AAG CGG GTG GGT AGT AG.




Table 1. Percent homology at the nucleotide and amino acid level between emu DMR Tl sequences and chicken and human DMR T I



Discussion
We conclude from these studies that a homologue of DMRTl lies on the Z chromosome in the emu, but there is no copy on the W. Unexpectedly, we discovered a highly con­served sequence lying within intron 3 of the DMRTI gene.the homology of human chromosome 9 with the chicken Z chromosome immediately suggested that this gene is critical for sex determination in birds. The expression ofDMRT1 during gonadogenesis in the chicken embryo is consistent with this hypothesis
If the conserved intron 3 region is responsible for regulating the activity of the DMRTl gene, it may have an important role in regulating the dosage of gene product in birds, and, therefore, in the regulation of sex determination. The difference in DMRT1 expression between males and females approaches the 2:1 ratio predicted by gene dosage. Methylation of the DMRTl locus in females regulated by a locus on the W may protect this locus from dosage compensation (Teranishi et aI., 2001). The conserved sequence within DMRT1 intron 3 may mediate this control.

استاد: سرکار خانم دکتر محمودي. ارائه: سميه شمس الهي




خداوندا سرنوشت مرا خير بنويس....

که آنچه را که تو زود مي خواهي، دير نخواهم

و چيزي را که تو دير مي خواهي، زود نخواهم
Knowledge on fish reproduction is of high relevance for basic fish biology and comparative evolution .Reproduction in fishes is regulated by the integration of endogenous neuroendocrine (gonadotropins), endocrine and autocrine / paracrine signals
with exogenous(enviromental) factors such as food availability,temperature and season.
The main endocrine regulators of gonadal sex differention and function are steroid hormones.

recent studies suggest that other hormones are also involved. most prominent among these factors are the insulin-like growth factors(Igfs).i.e Igf1,Igf2,and most resently Igf3.


Sexual differentiation goes along with cell proliferation and tissue growth suggesting that factors, particularly the insulin-like growth factors(igf1,igf2),that exert numerous essential functions in fish.

The primary stimulus for the synthesis of liver igfs and their release into the circulation is growth hormone (Gh) from the anterior pituitary.

Reproduction methods in fishs

Ovoviviparity

Oviparity

Progenesis

Enviromental factores effective in maturation fishs

رفتارهای جفت گیری در پرندگان. استاد :خانم دکتر محمودی



استاد :خانم دکتر محمودی
دانشجو: طلیعه شیرافکن
دانشگاه آزاد اسلامی واحد همدان
سالتحصیلی:88-89


Peafowl offer an excellent example of a feature display. Colorful iridescent eyelike ocelli are located on the highly elongated tail coverts; about 100-175 such ocelli may be present on a single adult male. These male displays are mostly frontally oriented to exhibit the ocelli maximally. In an observational study, Rands, Ridley, and Lelliot (1984) found that male peafowl that were reproductively successful were of intermediate age, did not have longer tails or greater body mass than other males, but they spent more time displaying sexually. Furthermore, the males with the most elaborate trains were typically most effective in attracting females (Petrie, Halliday, & Sander, 1991). Thus, the beautifully iridescen
Peafowl offer an excellent example of a feature display. Colorful iridescent eyelike ocelli are located on the highly elongated tail coverts; about 100-175 such ocelli may be present on a single adult male. These male displays are mostly frontally oriented to exhibit the ocelli maximally. In an observational study, Rands, Ridley,
and Lelliot (1984) found that male peafowl that were reproductively successful were of intermediate age, did not have longer tails or greater body mass than other males, but they spent more time displaying sexually. Furthermore, the males with the most elaborate trains were typically most effective in attracting females (Petrie, Halliday, & Sander, 1991). Thus, the beautifully iridescent ocelli of the peacock tail acts as a sexual stimulus for peahen. The Bulwer’s pheasant also signals females of sexual interest by displaying a fan of tail feathers. The stark white tail feathers contrast dramatically with the dark black feathers on the body
t ocelli of the peacock tail acts as a sexual stimulus for peahen. The Bulwer’s pheasant also signals females of sexual interest by displaying a fan of tail feathers. The stark white tail feathers contrast dramatically with the dark black feathers on the body

For female great frigate birds, the most powerful sexual stimulus comes in the form of an inflated red throat. Male frigate birds solicit females from a nest site by inflating a fleshy scarlet pouch beneath the throat. When a female is nearby, males accentuate their ballooning throats by spreading and vibrating their black wings. The kori bustard also inflates a throat pouch to attract females, however, the ballooning pouch is covered in long, wispy feathers rather than the brightly colored flesh of the frigate bird.
Courtship dances are another type of visual signal used to induce sexual behavior in potential mates. For instance, the sexual display of the great snipe male involves vigorous activity rather than ornamentation. When a female approaches a male, a male will shift his activity from territorial defensive behaviors to intense flutter-leaping near the female. Females of lekking

Development of heartProduced by : Fatemeh abdollahzade Supervisor : Dr. mahmudi


Heart embryo development
Cardiac crescent
Linear heart tube
Looping heart
Chamber formation

Cardiac crescent


In higher vertebrates, heart formation is a complex
process that starts at early stages of embryogenesis,
prior to the end of gastrulation, with commitment of anterior
lateral plate mesoderm cells to the cardiogenic lineage and
their migration and organization into the cardiac crescent.
Commitment to a cardiac fate is the result of inductive signaals from the underlying endoderm, which include :Bone morphogenetic proteins (BMPs)
Basic fibroblast growth factors
Wnt proteins
After aligning into a cardiogenic crescent (~Day 20 in the human embryo), the precardiac cells differentiate and assemble as the bilateral heart tubes (24, 67). At this time, vasculogenesis is also taking place (65) as the formation of the vasculature is tightly correlated with heart development
Looping heart


As development proceeds, the primitive heart tube undergoes a series of complex events, which include chamber specification, septation, and trabeculation, to form the definitive four-chambered heart (Fig. 1). Defects in compartmentalization and proper communication between the four chambers account for the majority of human congenital heart defect (CHD; discussed below). Although the molecular mechanisms underlying cardiac morphogenesis remain largely unknaown, the production of mice in which specific genes were inactivated (“knockouts”) has allowed the identification of proteins involved in chamber maturation and heart morphogenesis (Table 1). Chamber specification is a very early event since the beating heart tube is organized with an anteroposterior polarity anad specific segments are already fated to become, from anterior to posterior, the aortic sac, the conotruncus, the right ventricle, the left ventricle, the atria, and the sinus venosus of the mature heart (Fig. 1). Thus, subtle alterations in early myocyte differentiation could lead to defects in cardiac looping, septation, and compartmentalization. The mechanisms controlling heart tube regionalization are not fully understood.
Chamber formation
In addition to heart-tube-derived myocytes, the mature
heart contains myocytes derived from a distinct heart field,
located in the pharyngeal mesoderm and referred to as the
secondary or anterior heart field (AHF) [30]. Cells from the
AHF are incorporated in the growing heart tube during
the looping stage at the venous and arterial poles. Recently, it
was shown that the myocardium of the right ventricle is
derived from the AHF, further underlining the differences
between the two ventricular compartments [31,32]. The fact
that myocardial cells appear to derive from two embryological
distinct mesodermal lineages is important in understanding
the molecular basis of diseases that differentially
affect the left or right ventricles.

The subsequent stages involve a series of complex steps during which the tubular heart is transformed into a multichambered organ

Factors:
GATA-4
NKX 2.5
TBX 5
HAND 1
HAND 2

GATA-4
nevertheless, transcription
factor (TF) GATA-4, initially identified as one of the key TFs
required for expression of the cardiac natriuretic peptide
genes NPPA and NPPB, is emerging as the critical regulator
of the earliest stages of cardiogenesis. First, GATA-4 is the
competence factor required to allow cells to respond to
cardioinductive substances [1,2], and its combined action
with another TF, Nkx2.5, mediates BMP signaling [3].
During in vitro cardiogenesis, GATA-4 expression precedes
that of Nkx2.5 and several other cardiac regulators and is
essential for survival of cardioblasts [4]. GATA-4 acts
synergistically with the SMAD proteins, the intracellular
effectors of the TGF/BMP signaling pathway to activate
Nkx2.5 transcription [5]. Ectopic GATA-4 expression is
sufficient to induce cardiogenesis in ES cells and in Xenopus
embryonic ectoderm [6]. GATA-4 cardiogenic activity
reflects its activation of cardiogenic growth factors like
BMP-4 [7] as well as other TFs required for heart formation
[8,9]. Thus, GATA-4 is a central player of a self-reinforcing
feedback loop at the onset of cardiogenesis.
NKX 2.5
Although Nkx2.5 is expressed
uniformly throughout the heart, detailed analyses of a
null mutation of Nkx2.5 in mice suggest that Nkx2.5 is
required for proper chamber specification. In human,
mutations in Nkx2.5 are associated with septal and
conduction defects

TBX 5
Another TF, Tbx5, a member of the growing family of
T-box factors, is essential for atrial formation, as evidenced
by the phenotype of null Tbx5 mice [14]. Tbx5 is the gene
mutated in Holt–Oram syndrome (HOS), an autosomal
dominant disease affecting heart and limb development.
Interestingly, mice with heterozygous deletion of Tbx5
recapitulate the full spectrum of HOS

HAND 1 & HAND 2
In addition, two
basic helix–loop–helix TFs, Hand1 and Hand2, which are
expressed in the precardiac mesoderm as well as in
noncardiac precursor cells, have been associated with right and left ventricular specification. Hand2 is expressed
throughout the straight heart tube but becomes restricted to
the future right ventricle during looping, while Hand1 is
restricted to the anterior and posterior regions of the heart
tube, which are fated to become the conotruncus and left
ventricle, respectively. Inactivation of the Hand2 gene in
mice results in embryonic lethality at the looping stage and
the segment of the heart tube destined to form the right
ventricle is absent [15]. Loss of Hand1 results in even earlier
embryonic lethality due to placentation defects, but chimeric
analysis (that rescues the placentation defect) suggests that
Hand1 is required to ensure proper cardiac looping

تاریخچه جنین شناسی.تهیه شده توسط خانم الناز نقوی.استاد:دکتر محمودی






اارسطونخستین دانشمندی بود که 340 سال قبل از میلاد به مطالعات علمی در زمینه جنین شناسی پرداخت . کارهای وی اگرچه از نظر دانش امروزی دارای نواقص زیادی است ولی از این نظر که مطالعاتش نقطه آغازی برای دانش جنین شناسی است حائز اهمیت مي باشد .

اارسطوگمان می کرد که موجود زنده از دو راه به وجود می آید :

* اول اینکه جنین از قبل آماده و ساخته شده است ودر دوران جنینی صرفا نمو کرده وبزرگ می شود.

* دوم اینکه موجود زنده سیر تکامل نمو جنینی خود را از ماده بی شکلی آغاز کرده و تدریجا نمو و تکامل فردی خود را به پایان می رساند .
کمی پس از مشاهده فولیکول های تخمدان به وسیله Graaf در سال 1972 ، دو دانشمند به نامهای Leeuwenhock و Hammدر سال 1977برای اولین بار اسپرم انسان را مشاهده کردند .

با کشف گامت دو نظریه مطرح شد :

1-:Spermits اسپرم محتوی فرد کامل مینیاتوری است و تخمک تغذیه کننده است.
2- : Ovistsتخمک محتوی فرد کامل مینیاتوری است و نمو آن به وسیله مایع سمن تحریک می شود .

با ارائه تئوری سلولی توسط اشلیدن و شوان در سال 1939 (Mathias Schleiden and Schwann Theodor) اساس جنین شناسی مدرن پی ریزی شد و جنین شناسی به عنوان یک علم آغاز گردید.


Developmental biologist Lewis Wolpert said about gastrulation :

“ It is not birth , marriage , or death , but gastrulation , which is truly the most important time of your life . “

Gastrulation

Although humans and frogs differ greatly in the structure of the blastula (called a blastocyst in humans) and in the process of gastrulation , in each case gastrulation sets the stage for the formation of the adult body . In gastrulation , the three embryonic tissue layers move into the positions where they begin to develop into the adult’s organs and tissues .
In fact The purpose of gastrulation is to create the three embryonic germ layers:
The ectoderm, mesoderm, and endoderm.

Each layer gives rise to specific tissue and organs in the developing embryo.

There are four kinds of tissue movements that drive gastrulation in Xenopus:

invagination

involution

convergent extension

epiboly.
The eggs and zygotes of many animals (not mammals) have a definite polarity.
The polarity is defined by the distribution of yolk.
The vegetal pole has the most yolk and the animal pole has the least.
Cleavage planes usually follow a specific pattern that is relative to the animal and vegetal poles of the zygote.
Animal pole blastomeres are smaller.
Blastocoel in animal hemisphere.
Little yolk, cleavage furrows complete.
Holoblastic cleavage
The mid blastula transition

Praparing for gastrulation

Involuting

marginal zone
Paraxial protocadherin

&

Axial protocadherin
Amphibian Gastrulation :
Quick Overview
1.Gastrulation begins at the future dorsal side, below the equator (marginal zone) when prospective endodermal cells (bottle cells) invaginate and form a slit (blastopore). The bottle cells line the early archenteron.
2. The marginal zone cells undergo involution at the dorsal lip of the blastopore.
3. After the bottle cells, the next cells that enter the embryo form the prechordal plate (head mesoderm), and the mesoderm of the notochord.
4. Simultaneously, the animal cells undergo epiboly, completely surrounding the surface of the embryo until a ventral lip of the blastopore forms.
5. The last endodermal cells on the surface appear as the yolk plug.
6. The yolk plug is eventually covered by ectoderm.


Gastrulation effects
moves
endoderm inside

surrounds
embryo with ectoderm

place
mesodermal cells in between

places
cells in proper position for induction

تهیه شده توسط مهندس الناز نقوی.دانشجوی کارشناس ارشد فیزیولوژی جانوری

مقاله:بيان ونقش BMP3 در طي رشد اندام جوجه.استاد: خانم دكتر محمودي

بيان ونقش BMP3 در طي رشد اندام جوجه

استاد: خانم دكتر محمودي
دانشجو:فهيمه شعبانلو
دوره كارشناسي ارشد رشته علوم جانوري


Bone morphogenetic proteins (BMPs), members of the transforming growth factor- superfamily of structurally related secreted growth factors, are expressed throughout the developing skeleton where they influence cell type specification, cell differentiation, and apoptosis during endochondral ossification. In the skeleton, the primary way BMPs affect their target cells is by binding to receptor complexes consisting of combinations of type I (Alk2, Alk3, or Alk6) and type II (BMPR-II or ActRIIA, ActRIIB) serine-threonine kinases that then activate the canonical BMP-specific Smad signaling pathway (R-Smads 1,5,8), or the MAPK pathway (Derynck and Zhang,[2003]). As BMP receptors are present in various combinations on virtually all skeletal cell types, BMP activity must be tightly regulated both spatially and temporally to ensure proper bone development (Canalis et al.,[2003]).

One way in which precise control of BMP signals occurs is through the formation of BMP ligand and antagonist complexes that prevent BMPs from engaging their receptors
Antagonists are secreted into the extracellular space where they bind with high affinity to BMPs, and dampen BMP signaling (Balemans and Van Hul,[2002])
Another level of control of BMP activity in the skeleton appears to come from BMP3, The net result of the BMP3-ActRIIB interaction is a decrease in BMP
We find that misexpression of BMP3 in the chick limb reduces BMP signaling, enhancing chondrocyte proliferation before hypertrophic chondrocyte differentiation, thus widening skeletal elements and producing joint fusions.

Expression of BMP3 during normal chick limb development. A-L: Whole-mount in situ hybridization of BMP3 expression in developing chick legs (A-G) A: At stage 20, BMP3 is expressed in the developing somites but not in the hindlimb bud. B: At stage 23, BMP3 is expressed in the dorsal and ventral mesenchyme. C: At stage 24, BMP3 expression broadens and expands distally. D: Anterior view of stage 24 leg bud. BMP3 transcripts are excluded from the central core mesenchyme. E: At stage 25, BMP3 is expressed in both the proximal and distal mesenchyme. F: At stage 27, BMP3 expression outlines where the future zuegopod will form. G: At stage 31, BMP3 is expressed in the perichondrium and forming bone collar of the developing bones in the leg and foot and in the digit tips. At stage 23, ActRIIB transcripts are found throughout the limb mesenchyme surrounding the developing cartilages (Fig. 2E) and appear to be expressed near BMP3 in the dorsal and ventral mesenchyme (Fig. 2A,E).
we found that overexpression of BMP3 caused an obvious expansion of the cartilages of the humerus and ulna when compared with the contralateral control (n = 28/30 with widened skeletal elements; Fig. 4A,). When we performed histological analysis of day 8 wings, we found that the cartilages of the proximal ulna and humerus were clearly wider in the BMP3-infected limb, and no joint space formed between these skeletal elements (Fig. 4D).
To determine whether misexpression of BMP3 would alter BMP signaling, we analyzed phospho-Smad 1,5,8 levels in control and RCAS-BMP3 infected limb buds 48 hr after injection (day 5). Limbs infected with RCAS-BMP3 showed reduced levels of phospho-Smad 1,5,8 when compared with controls (Fig. 3B).
ترجمه این مقاله به صورت مکتوب می باشد که پس از تایپ شدن در این وبلاگ، منتشر خواهد شد